Посев и микроскопия отделяемого нижних дыхательных путей с определением чувствительности к расширенному спектру антибиотиков

Исследуемый материал для этого исследования: мокрота, промывные воды бронхов или трахеи . Мокрота формируется из секрета нижних дыхательных путей, но при откашливании проходит через ротоглотку и неизбежно контактирует с её микрофлорой, поэтому для неё особенно важна оценка клеточного состава: большое количество плоского эпителия указывает на существенную примесь слюны, а преобладание лейкоцитов и однотипной бактериальной флоры соответствует воспалительному секрету. Промывные воды бронхов и трахеи получают непосредственно из дыхательных путей, поэтому их результат в меньшей степени зависит от примеси ротоглоточной флоры, однако интерпретация всё равно учитывает способ получения материала и возможность колонизации дыхательных путей. Микроскопия показывает количество эпителиальных клеток и лейкоцитов и морфологию обнаруженной флоры, а посев определяет вид и количество жизнеспособных микроорганизмов. В лабораторном бланке эти параметры отражаются отдельно, что позволяет сопоставить микроскопическую картину с результатом культуры.

Посев используют для установления бактериальной этиологии инфекции нижних дыхательных путей и определения микроорганизма, преобладающего в воспалительном секрете. В спектр исследования входят Haemophilus influenzae, Streptococcus pneumoniae, Moraxella catarrhalis, Staphylococcus aureus , включая MRSA, гемолитические стрептококки, представители Enterobacterales, в том числе Escherichia coli, Klebsiella, Enterobacter и Proteus , а также Pseudomonas и Acinetobacter . Для мокроты рост обычной микрофлоры ротоглотки не рассматривается как доказательство инфекции нижних дыхательных путей только по факту посева; его сопоставляют с микроскопией и количеством роста. Для промывных вод бронхов и трахеи значение приобретает уже сам характер выделенной культуры и её соответствие воспалительному процессу в нижних дыхательных путях. При госпитальной инфекции, длительной искусственной вентиляции, бронхоэктазах и после повторных курсов антибиотиков выявление Pseudomonas, Acinetobacter , MRSA и других устойчивых бактерий позволяет скорректировать антибактериальную терапию по фактической чувствительности возбудителя. Candida также входит в культуральный поиск; лаборатория учитывает рост более 10³ КОЕ/тамп как количественно значимый, однако выделение дрожжей из респираторного секрета само по себе не подтверждает кандидозную пневмонию.

Если при посеве выделена бактерия, связанная с инфекционным процессом, определяется её чувствительность к расширенному спектру антибиотиков. Антибиотикограмма показывает профиль устойчивости конкретного штамма и позволяет выявить резистентность, которая объясняет неэффективность ранее назначенной терапии и определяет выбор препарата. Для S. aureus лабораторная панель включает, в частности, оксациллин, цефтаролин, клиндамицин, ингибиторозащищённые β-лактамы, цефалоспорины, карбапенемы, гентамицин, фторхинолоны, макролиды, ванкомицин и линезолид; отдельно оценивается индуцибельная резистентность к клиндамицину. Антибиотикограмма не выполняется для нормальной и сопутствующей флоры, а также для условно-патогенных микроорганизмов без диагностического значения при росте менее 10⁴ КОЕ/тамп, КОЕ/мл или КОЕ/г. Антибактериальная терапия до получения материала подавляет чувствительную флору и изменяет состав выделяемых микроорганизмов за счёт отбора устойчивых штаммов. Вирусы, хламидии, микоплазмы и возбудители, требующие специальных условий культивирования, этим исследованием не выявляются.